lunes, 1 de diciembre de 2014

Experiencia Teatro Negro

Experiencia Teatro Negro.

1. Se conoce y valora a sí mismo y aborda problemas y retos teniendo en cuenta los objetivos que persigue.
Atributo
Asume las consecuencias de sus comportamientos y decisiones.

Trabaja en forma colaborativa
8. Participa y colabora de manera efectiva en equipos diversos.
Atributos:

Asume una actitud constructiva, congruente con los conocimientos y habilidades con los que cuenta dentro de distintos equipos de trabajo.

Esta obra de teatro es muy importante dentro de nuestro plan de estudios, ya que debemos dar a conocer todo lo que nosotros hemos aprendido dentro de este semestre en la materia de parasitología, por lo que todos estamos poniendo nuestro mayor esfuerzo para poder sacar adelante este proyecto y así poder decir que cumplimos con las competencias necesarias para poder seguir avanzando con nuestros estudios.

Además de poder obtener una muy bonita experiencia de todo este trabajo en equipo de los dos grupos de la especialidad de Laboratorio Clínico.






Imágenes proporcionadas por: Lourdes Idolina Ramírez Sebastián.

Extendido fino

Extendido Fino de Malaria

¿Que aprendimos?

¿Que aprendí?

Lo que aprendimos esta vez al realizar una nueva técnica parasitológica llamada “Extendido fino de Malaria”, fue que para detectar la presencia de parásitos en el cuerpo de algún individuo no solo se trabaja con muestras de Heces Fecales sino que también se utilizan muestras sanguíneas como lo hicimos en este caso, conocer esto también nos sirve para no estancarnos en un solo tipo de técnicas sino también aprender a realizar muchas más que no conozcamos para así poder decir que eres competente en las actividades que tu realizas en tu vida cotidiana.

¿Como lo hice?


Primero pedimos todo el material que se iba a ocupar en las 2 prácticas diferentes que íbamos a realizar las cuales fueron “Gota gruesa y Extendido Fino” ya que teníamos que comprobar mediante diferentes tipos de técnicas los resultados de la muestra, fueran positivos o fueran negativos.

Como segundo paso, extendimos el papel de estraza en el área de trabajo en la cual íbamos a realizar nuestras prácticas ya mencionadas anteriormente, en este caso nosotros íbamos a trabajar en una de las tarjas del laboratorio para así no manchar con muestras sanguíneas ninguna de las mesas de trabajo y  así mantener nuestro entorno limpio. 

Toma de muestra

Tener todos los materiales listos. Es importante que el porta-objetos se encuentre limpio, libre de grasa que interfiera con la adhesión de la sangre al porta-objetos (o con el deslizamiento de la misma en el caso del extendido).

Como siguiente paso, frotamos enérgicamente la yema del dedo del paciente con algodón humedecido con alcohol al 70%. Secamos con algodón seco. El dedo se sostiene enérgicamente y se pincha en forma rápida. La primera gota de sangre se seca con algodón seco.  


Posteriormente tomamos un porta objetos y lo inclinamos en un ángulo de 30° y hacemos un extendido fino de la gota de sangre antes puesta sobre el primer porta objetos. Lo dejamos secar. 

    

Ya que la muestra está totalmente seca cubrimos toda la muestra con colorante Wright por 3 minutos

Después le agregamos la misma cantidad de colorante pero ahora de Solución Buffer por 6 minutos.


            Ya pasados los 8 minutos lavamos el exceso de colorante y solución con agua destilada que estaba contenida en una piceta. Dejamos que secara.


Ya seca la muestra observamos al microscopio con el objetivo de inmersión.


¿Qué problemas tuvimos?

Los problemas que se nos presentaron esta vez dentro del equipo fue que nos tardamos mucho un poco de tiempo en pedir material ya que la Gota gruesa y el Extendido fino son técnicas un poco trabajosas y algo tediosas para que las hagamos al mismo tiempo, además de que al principio no nos pusimos de acuerdo con las cosas que iba a hacer cada integrante del equipo con respecto a las practicas antes mencionadas que se iban a realizar ese mismo día en el laboratorio por lo que los pocos problemitas de organización junto con el desarrollo tardado de los procedimientos que se realizaron nos dieron una oportunidad de llevar a cabo con éxito las prácticas que se nos habían dejado un poco más bajas de las que teníamos como expectativas en nuestro equipo.

¿Cómo los resolvimos?

Ya que dentro de la práctica había algunos puntos que no comprendíamos tuvimos que leer detenida y cuidadosamente este procedimiento hasta que nos quedara muy claro lo que teníamos que hacer para así no estar realizando errores que pusieran en duda nuestras capacidades y así poder dar buenos resultados.

También se presentó el problema de lo trabajosa que eran las practicas que realizamos en esta ocasión, la solución fue que teníamos que realizar el procedimiento lo más rápido posible para que así pudiéramos demostrar que somos lo suficientemente aptos para realizar cualquier tipo de estudio de tipo parasitológico.

Bibliografía:
López Antuñano FJ y G Schmunis, E. D. (s.f.). Obtenido de http://www.bvs.hn/RMH75/pdf/1999/pdf/Vol67-3-1999-7.pdf

Rina Girard de Kaminsky, M. Sc. (2003) Manual de parasitologia, Método para laboratorio de atención primaria de salud. Honduras 2da : 2da Edicion

Gota gruesa

Gota gruesa de Malaria

¿Que aprendí?

Lo que aprendimos esta vez al realizar una nueva técnica parasitológica llamada “Gota gruesa de Malaria”, fue que para detectar la presencia de parásitos en el cuerpo de algún individuo no solo se trabaja con muestras de Heces Fecales sino que también se utilizan muestras sanguíneas como lo hicimos en este caso, conocer esto también nos sirve para no estancarnos en un solo tipo de técnicas sino también aprender a realizar muchas más que no conozcamos para así poder decir que eres competente en las actividades que tu realizas en tu vida cotidiana.

¿Como lo hice?

Primero pedimos todo el material que se iba a ocupar en las 2 prácticas diferentes que íbamos a realizar las cuales fueron “Gota gruesa y Extendido Fino” ya que teníamos que comprobar mediante diferentes tipos de técnicas los resultados de la muestra, fueran positivos o fueran negativos.

Como segundo paso, extendimos el papel de estraza en el área de trabajo en la cual íbamos a realizar nuestras prácticas ya mencionadas anteriormente, en este caso nosotros íbamos a trabajar en una de las tarjas del laboratorio para así no manchar con muestras sanguíneas ninguna de las mesas de trabajo y  así mantener nuestro entorno limpio. 

Toma de muestra

Tener todos los materiales listos. Es importante que el porta-objetos se encuentre limpio, libre de grasa que interfiera con la adhesión de la sangre al porta-objetos (o con el deslizamiento de la misma en el caso del extendido).

Como siguiente paso, frotamos enérgicamente la yema del dedo del paciente con algodón humedecido con alcohol al 70%. Secamos con algodón seco. El dedo se sostiene enérgicamente y se pincha en forma rápida. La primera gota de sangre se seca con algodón seco.  


Posteriormente en el centro de un porta objetos colocamos una gota de sangre antes obtenida y usando la esquina del segundo porta objetos extendemos la muestra de sangre formando un rectángulo de grosor considerable.


Después dejamos secar la muestra, podemos intensificar el proceso aplicando un poco de calor


Tinción con colorante Giemsa:

Fijamos la muestra con alrededor de 2 a 3 gotas de alcohol metílico y lo dejamos secar.

Posteriormente ya que la muestra se encontraba seca cubrimos la muestra con el colorante Giemsa y lo dejamos durante 8 minutos.


Después quité el exceso del colorante con una piceta que contenía agua destilada, y dejamos secar al aire.


Por último observamos la muestra al microscopio con el objetivo de inmersión.

¿Qué problemas tuvimos?

Los problemas que se nos presentaron esta vez dentro del equipo fue que nos tardamos mucho un poco de tiempo en pedir material ya que la Gota gruesa y el Extendido fino son técnicas un poco trabajosas y algo tediosas para que las hagamos al mismo tiempo, además de que al principio no nos pusimos de acuerdo con las cosas que iba a hacer cada integrante del equipo con respecto a las practicas antes mencionadas que se iban a realizar ese mismo día en el laboratorio por lo que los pocos problemitas de organización junto con el desarrollo tardado de los procedimientos que se realizaron nos dieron una oportunidad de llevar a cabo con éxito las prácticas que se nos habían dejado un poco más bajas de las que teníamos como expectativas en nuestro equipo.

¿Cómo los resolvimos?

Ya que dentro de la práctica había algunos puntos que no comprendíamos tuvimos que leer detenida y cuidadosamente este procedimiento hasta que nos quedara muy claro lo que teníamos que hacer para así no estar realizando errores que pusieran en duda nuestras capacidades y así poder dar buenos resultados.

También se presentó el problema de lo trabajosa que eran las practicas que realizamos en esta ocasión, la solución fue que teníamos que realizar el procedimiento lo más rápido posible para que así pudiéramos demostrar que somos lo suficientemente aptos para realizar cualquier tipo de estudio de tipo parasitológico.

Bibliografía:
López Antuñano FJ y G Schmunis, E. D. (s.f.). Obtenido de http://www.bvs.hn/RMH75/pdf/1999/pdf/Vol67-3-1999-7.pdf

Rina Girard de Kaminsky, M. Sc. (2003) Manual de parasitologia, Método para laboratorio de atención primaria de salud. Honduras 2da : 2da Edicion

Coproparasitoscópico Directo

Coproparasitoscopico directo.

¿Que aprendí?

Aprendimos esta vez a realizar un procedimiento nuevo de una práctica que es la técnica de Coproparasitoscópico directo que llevamos a cabo esta vez en el laboratorio, esto nos ayudó no solo a conocer más sobre los estudios de laboratorio sino también a darnos más experiencia en el ámbito practico dentro de lo que es la especialidad que tenemos, para así poder llegar con una buena formación a niveles escolares más avanzados como lo son los estudios universitarios o en caso de que decidamos irnos a trabajar terminando el CBTis tener experiencia laboral dentro de las actividades que podemos desempeñar posteriormente en cualquier momento de nuestra carrera.

¿Como lo hice?

Primero rotulamos el portaobjetos con el cual íbamos a trabajar.

Después de un lado colocamos una gota de solución salina y en el otro extremo colocamos una gota de Lugol.

Posteriormente con un aplicador de madera tomamos una pequeña muestra de heces fecales y hacemos una disolución en fresco en el portaobjetos primero mezclando en la gota de solución salina para dejar a lo último la mezcla en la gota de lugol.

Al termino del paso anterior tomamos un cubre objetos y cubrimos la mezcla de solución salina y después con otro cubreobjetos cubrimos la muestra con la gota de lugol.

Al final se observó al microscopio para ver si detectábamos la presencia de algún parásito en las heces fecales de la persona.


¿QUÉ PROBLEMAS TUVIMOS?

Nos organizamos para pedir muestras y se platicó con algunos alumnos acerca del método para localizar parásitos, se le proporcionó un bote para muestras con anticipación pero el día de la práctica solo 3 alumnos llevaron su muestra y nos dimos en la tarea de tratar de conseguir más pero por tiempo no pudimos conseguir. También el frotis en el portaobjetos quedo muy concentrado, solo se visualizaban fibras.

¿CÓMO LO RESOLVIMOS?

En equipo y en grupo tratamos de animar a los alumnos para que llevaran sus muestras, explicándoles el procedimiento y el objetivo de este método, así conseguimos una muestra más, y cuando vimos en el frotis el exceso de muestra tratamos de realizar otro pero por cuestiones de tiempo no pudimos repetirlo, pero así en equipo pudimos superar estos problemas para conseguir nuestra competencia. Siempre teniendo respeto hacia las ideas de los demás.

Bibliografía:

Rina Girard de Kaminsky, M. Sc. (2003) Manual de parasitologia, Método para laboratorio de atención primaria de salud. Honduras 2da : 2da Edicion
VIAJE A IXTLAN
El viaje realizado el día 17 de Octubre de 2014 a la comunidad de Ixtlan de Juárez Oaxaca, al equipo 4 nos dejó como experiencia que a veces las cosas no salen como se planean, pero no hay que desanimarse porque puede que se aproveche en otra forma también es importante saber resolver los problemas presentados. Al llegar a la comunidad nos organizamos de manera adecuada y contábamos con los materiales necesarios para la realización del Método directo para la detección de enfermedades parasitarias en dicha comunidad. Días antes de la realización de la práctica, se dio una plática a los padres de familia para que llevaran el día acordado la muestra debidamente presentada. Aunque los resultados no fueron los esperados, puesto que solo una madre de familia presento su muestra, tuvimos una buena y positiva actitud ante este hecho. Al darnos cuenta que los padres de familia no llegaban, en forma grupal se procedió a llevar a cabo una lluvia de ideas. El grupo acordó en hacer una visita para aprovechar el viaje al parque ecuo turístico de esa misma localidad, aunque se  presentó un problema, el autobús en el que nos transportábamos no tenía en cuenta el cambio de planes pero llegamos a un acuerdo. Así llegamos a dicho parque en el cual convivimos como grupo y algunos compañeros se subieron a la tirolesa.



MÉTODO DE KATO KATZ
¿QUÉ APRENDIMOS?
A realizar la técnica de Kato Katz; es una técnica para cuantificar la intensidad parasitaria en un gramo de heces y se procede semejantemente a la técnica de Kato Katz. Es adecuado en encuestas, monitoreos y evaluación de programas de control de nematodos transmitidos por el suelo y schistofomiasis.
Este método tiene varias ventajas los materiales son accesibles, baratos y transportables, se pueden guardar durante 6 meses, pero también tiene desventajas, solo se realiza en heces frescas y sólidas y sirve solo para la detección de huevos.
Durante la práctica aprendimos a pedir y respetar opiniones de todos los integrantes del equipo y a identificar distintos parásitos, también a rotar los diferentes trabajos para tener una coopetencia completa, a coordinarse con las compañeras para resolver problemas inesperados para cumplir nuestro objetivo, a apoyar o pedir apoyo a los demás equipos, a trabajar sin la presencia del profesor.
¿CÓMO LO HICIMOS?
Teniendo los materiales en la tarja previamente lavados y secados procedimos a hacer la técnica, primero tomamos los cuadros de celofán y los sumergimos en la solución de glicerina con verde de malaquita al 3%.
Depositamos un poco de heces en el papel periódico, después colocamos la rejilla encima presionando para que parte de las heces pasaran a través de ella raspando con una espátula la parte superior para recoger las heces que pasaban a través de la rejilla, luego colocamos un templete casero (cuadro de papel cascaron con un orificio en el centro) y en medio del portaobjetos ya rotulado en la parte inferior, depositamos la materia fecal de la espátula en el orificio hasta llenarlo.
Retiramos en templete y cubrimos la materia fecal del portaobjetos con un cuadro de papel celofán sumergido en glicerina con verde de malaquita, con un dedo comprimimos las heces hasta quedar uniformemente extendido. Esperamos entre 30 a 40 minutos mientras la glicerina aclara las heces, una vez aclarado se observa al microscopio.
¿QUÉ PROBLEMAS TUVIMOS?
Nos organizamos para pedir muestras y se platicó con algunos alumnos acerca del método para localizar parásitos, se le proporcionó un bote para muestras con anticipación pero el día de la práctica solo 3 alumnos llevaron su muestra y nos dimos en la tarea de tratar de conseguir más pero por tiempo no pudimos conseguir. También el frotis en el portaobjetos quedo muy concentrado, solo se visualizaban fibras. No contábamos con templete en el laboratorio.

¿CÓMO LO RESOLVIMOS?
En equipo y en grupo tratamos de animar a los alumnos para que llevaran sus muestras, explicándoles el procedimiento y el objetivo de este método, así conseguimos una muestra más. Al darnos cuenta que no había templete, recibimos ideas de los demás equipos hasta llegar a realizar un templete de papel cascaron y cuando vimos en frotis en exceso de muestra tratamos de realizar otro pero por cuestiones de tiempo no pudimos repetirlo, pero así en equipo pudimos superar estos problemas para conseguir nuestra coopetencia. Siempre teniendo respeto hacia las ideas de los demás.

                                                                                      
DGETI Centro de Bachillerato Tecnológico industrial y de servicios N° 26

Identifica Microorganismos con Base en Técnicas Parasitológicas (IMBTP)

Prácticas
3° Q   


Equipo 4

Prof.: Fausto Guzmán Ortiz














                                              PRÁCTICA 2.-  SULFATO DE ZINC.
¿QUÉ APRENDIMOS?

El equipo 4 realizó en el laboratorio la técnica de flotación por sulfato de zinc en dónde se buscaba concentrar huevos de ciertos helmintos y quistes de protozoos cuando las infecciones son muy leves y no se detectan en preparaciones directas. En esta como en muchas prácticas adquirimos conocimientos nuevos, uno de estos fue llevar a  cierta densidad una sustancia, en este caso teníamos  que poner el sulfato de zinc a 1.18, otro conocimiento necesario para cumplir la densidad fue que aprendimos a usar el hidrómetro que es un dispositivo que utiliza la fuerza de flotación para medir la gravedad específica de un líquido. Este aparato es de vidrio y posee un vástago de sección prismática que está graduado y en donde se realiza la medición. Cuando  introducimos en un líquido, el hidrómetro queda parcialmente sumergido, en posición vertical y con el vástago fuera de la superficie del líquido.
Esta fue una práctica muy completa ya que realizamos distintas actividades; centrifugamos, densificamos y observamos resultados, como fueron el hallazgo de un parásito denominado Entamoeba Histolytica, nuestra respuesta fue muy agradable ya que nos proporcionó satisfacción al ver que realizamos una buena práctica.
2.-¿CÓMO LO HICIMOS?

 Para llevar a cabo esta práctica era necesario tener primero los reactivos, materiales y muestras  que ocuparíamos.

1.- El sulfato de zinc a 1.18.

2.-Colorante lugol.

3.-Muestra de heces fecales.

4.-Embudo.

5.-Gasas.

6.-Aplicadores.

7.-Tubos de ensayo.

8.-Asa bacteriológica.

9.-Porta y cubreobjetos.

10.- Solución salina fisiológica.


11.-vaso de precipitados

PROCEDIMIENTO:

1.-Con un aplicador tomar de 1 a 1.5 g. de heces y hacer una suspensión en unos pocos mililitros de agua destilada en un vaso de precipitados.

2.-Filtrar a través de una gasa humedecida a un tubo de ensayo con ayuda de un embudo. 

3.- Centrifugar a 1,500-2,000 rpm por 2 minutos. Descartar el sobrenadante.

4.- Agregar de 2-3 ml. De solución de sulfato de zinc y agitar con un aplicador hasta suspender totalmente el sedimento. Agregar mas solución de sulfato de zinc hasta 1 cm abajo del borde del tubo de ensayo, sin dejar de agitar.

5.- Centrifugar a 2,000 rpm por 2 minutos. Los tubos de ensayo deben tener posición vertical en la centrifuga no inclinada.

6.- Sin sacar los tubos de la centrifuga, remover varías asadas de la película superficial y colocarlas sobre un portaobjetos. Esterilizar sistemáticamente la preparación. Para colorear los  quistes, remover con cuidado el cubreobjetos y añadir una pequeña gota de lugol.

Recomendaciones que se tomaron en cuenta.
Para identificar los quistes se procede a observar  con el objetivo x-100, para lo cual debe colocarse antes una pequeña gota de aceite sobre el cubreobjetos.

3.- ¿QUÉ PROBLEMAS TUVE?

TÉCNICA.
Cuando el equipo 4, se dispuso a realizar esta práctica, surgieron algunos inconvenientes en cuanto a desempeño de actividades, tales como llevar a 1.18 de densidad el sulfato de zinc. Como en toda nueva práctica  hay dificultades para realizar las actividades.

EQUIPO.
El único inconveniente que se presentó fue la organización ya que no sabíamos muy bien que era lo que cada quien iba a hacer.

¿CÓMO LO RESOLVÍ?

TÉCNICA
Resolvimos la dificultad de la densidad leyendo sobre como se iba a hacer y poniendo atención para realizar las cosas bien.

EQUIPO.
Nos repartimos las actividades y nos pusimos a trabajar.